Improvement of the phenol-utilizing yeast, candida tropicalis and development of its host-vector system by biotechnology

碩士 === 國立成功大學 === 生物化學研究所 === 80 === Candida tropicalis是一株由自然界中經過濃縮培養篩選而得的,具有資化酚類能力 的不完全酵母菌,此菌株不僅能夠在 17mM,1500ppm高濃度的酚類碳源培養基裡生長 ,更可利用烷類或脂肪酸大量增生peroxisome,以誘發參與B-oxidation pathway之 酵素生成;因此無論就探討酚類代謝機制,亦或是peroxisome增生之調節作用,開發...

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Bibliographic Details
Main Authors: JIANG, XUAN-YI, 江選毅
Other Authors: ZHANG, MIN-ZHENG
Format: Others
Language:zh-TW
Published: 1992
Online Access:http://ndltd.ncl.edu.tw/handle/45572843647064794278
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spelling ndltd-TW-080NCKU21070022016-02-17T04:16:59Z http://ndltd.ncl.edu.tw/handle/45572843647064794278 Improvement of the phenol-utilizing yeast, candida tropicalis and development of its host-vector system by biotechnology 酚類資化酵母菌Candidatropicalis之菌種改良及其宿主載體系統之開發 JIANG, XUAN-YI 江選毅 碩士 國立成功大學 生物化學研究所 80 Candida tropicalis是一株由自然界中經過濃縮培養篩選而得的,具有資化酚類能力 的不完全酵母菌,此菌株不僅能夠在 17mM,1500ppm高濃度的酚類碳源培養基裡生長 ,更可利用烷類或脂肪酸大量增生peroxisome,以誘發參與B-oxidation pathway之 酵素生成;因此無論就探討酚類代謝機制,亦或是peroxisome增生之調節作用,開發 其宿主載體系統實有其必要性。 有關宿主系統之構築,我們利用各種變異原加以抗生素濃縮之方式,篩選到四株腺嘌 呤 (Ade)之營養要求變異株,並命名為A-1,A-2,A-3,A-4,其中A-2與A-4之復歸率 均小於10 -7,再與S.cerevisiae重組菌X2181,XJ151進行細胞融合之實驗中,發現 A-2為 Ade1之突變種,再加以穩定性高之優勢,所以選擇其為宿主。而在載體部份, 利用 YEp13所構築的C.tropicalis基因庫形質轉換至SHY3(Ade1)細胞中,藉以選殖 ADE1基因當作標誌,此基因選殖工作目前仍處於一未完成的階段。 另一方面,C.tropicalis資化酚類是利用鄰位裂解途徑來進行,且此途徑上之首要酵 素phenol hydroxylase必須在酚類碳源的誘導下才能產生,若以葡萄糖為碳源則完全 無法偵測出活性。我們亦利用變異原濃縮篩選酚類資化欠損變異株,而得到四株無法 以酚類為碳源的突變種,命名為P-13,P-14,P-15,P-17,經過細胞萃取物之酵素分 析結果,發現P-17是屬於phenol hydroxylase缺失且相當穩定的變異株,而其餘三株 穩定性則較差。 進一步的實驗,利用P-15,P-17及A-1,A-2為母株,在 PEG-CaCl2的幫助下進行細胞 融合,如此得到十株酚類資化能力增強的融合株,達成菌種改良的目標;其中並有 F-3,F-4可在含22mM,約1950 ppm之酚類單一碳源的固態培養基上生長,顯現其超強 能力;而經過細胞萃取物之酵素分析結果,證實融合株F-3,F-4之phenol hydroxylase單位活性比黟生種高出一倍左右,如此似乎代表著由於 phenol hydroxylase 活性增強,造成融合株可布更高濃度的酚類培養條件下生長,亦即 phenol hydroxylase很可能負責了酚類代謝途徑上之速率決定步驟。 ZHANG, MIN-ZHENG 張敏政 1992 學位論文 ; thesis 95 zh-TW
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description 碩士 === 國立成功大學 === 生物化學研究所 === 80 === Candida tropicalis是一株由自然界中經過濃縮培養篩選而得的,具有資化酚類能力 的不完全酵母菌,此菌株不僅能夠在 17mM,1500ppm高濃度的酚類碳源培養基裡生長 ,更可利用烷類或脂肪酸大量增生peroxisome,以誘發參與B-oxidation pathway之 酵素生成;因此無論就探討酚類代謝機制,亦或是peroxisome增生之調節作用,開發 其宿主載體系統實有其必要性。 有關宿主系統之構築,我們利用各種變異原加以抗生素濃縮之方式,篩選到四株腺嘌 呤 (Ade)之營養要求變異株,並命名為A-1,A-2,A-3,A-4,其中A-2與A-4之復歸率 均小於10 -7,再與S.cerevisiae重組菌X2181,XJ151進行細胞融合之實驗中,發現 A-2為 Ade1之突變種,再加以穩定性高之優勢,所以選擇其為宿主。而在載體部份, 利用 YEp13所構築的C.tropicalis基因庫形質轉換至SHY3(Ade1)細胞中,藉以選殖 ADE1基因當作標誌,此基因選殖工作目前仍處於一未完成的階段。 另一方面,C.tropicalis資化酚類是利用鄰位裂解途徑來進行,且此途徑上之首要酵 素phenol hydroxylase必須在酚類碳源的誘導下才能產生,若以葡萄糖為碳源則完全 無法偵測出活性。我們亦利用變異原濃縮篩選酚類資化欠損變異株,而得到四株無法 以酚類為碳源的突變種,命名為P-13,P-14,P-15,P-17,經過細胞萃取物之酵素分 析結果,發現P-17是屬於phenol hydroxylase缺失且相當穩定的變異株,而其餘三株 穩定性則較差。 進一步的實驗,利用P-15,P-17及A-1,A-2為母株,在 PEG-CaCl2的幫助下進行細胞 融合,如此得到十株酚類資化能力增強的融合株,達成菌種改良的目標;其中並有 F-3,F-4可在含22mM,約1950 ppm之酚類單一碳源的固態培養基上生長,顯現其超強 能力;而經過細胞萃取物之酵素分析結果,證實融合株F-3,F-4之phenol hydroxylase單位活性比黟生種高出一倍左右,如此似乎代表著由於 phenol hydroxylase 活性增強,造成融合株可布更高濃度的酚類培養條件下生長,亦即 phenol hydroxylase很可能負責了酚類代謝途徑上之速率決定步驟。
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