| Summary: | CoordenaÃÃo de AperfeiÃoamento de Pessoal de NÃvel Superior === O objetivo deste estudo foi investigar os nÃveis de RNA mensageiro (RNAm) para ativina-A em folÃculos prÃ-antrais e antrais caprinos e os efeitos do hormÃnio folÃculo estimulante (FSH), ativina-A e fator de crescimento e diferenciaÃÃo - 9 (GDF-9) sobre o crescimento e a expressÃo de RNAm para ativina-A, GDF-9, proteÃna morfogenÃtica Ãssea (BMP) -2, -4, -6, -7, -15 e receptor de FSH (R-FSH) em folÃculos prÃ-antrais caprinos cultivados in vitro. Inicialmente, folÃculos primordiais, primÃrios e secundÃrios, bem como complexos cumulus-oÃcito (COCs) e cÃlulas da granulosa mural/teca de pequenos e grandes folÃculos antrais foram isoladas mecanicamente a partir de ovÃrios de cabra e a expressÃo de RNAm para ativina-A foi avaliada por PCR em tempo real. Para os estudos in vitro, folÃculos secundÃrios caprinos foram isolados e cultivados por 6 dias na presenÃa de FSH sozinho (50 ng/mL) ou em combinaÃÃo com ativina-A (100 ng/mL) ou GDF-9 (200 ng/mL). Isoladamente ou em combinaÃÃo com FSH, a influÃncia de ativina-A na expressÃo de ativina-A e R-FSH, e o efeito do GDF-9 sobre os nÃveis de RNAm para GDF-9, R-FSH e BMP -2, -4 , -6, -7 e -15 em folÃculos secundÃrios apÃs 6 dias de cultivo foram testados. Para isso, apÃs a extraÃÃo do RNA total e sÃntese do cDNA, os nÃveis de RNAm para ativina-A, GDF-9, R-FSH e BMP -2, -4, -6, -7 e -15 foram quantificados por PCR em tempo real. Os resultados mostraram que folÃculos secundÃrios apresentavam nÃveis menores de RNAm para ativina-A comparado aos folÃculos primÃrios (p<0,05). NÃo houve diferenÃa nos nÃveis de RNAm para ativina-A entre folÃculos primordial e primÃrio ou secundÃrio (p>0,05). Aliado a isso, nÃo houve diferenÃa entre COCs de pequenos e grandes folÃculos antrais (p>0,05). AlÃm disso, as cÃlulas da granulosa e da teca de grandes folÃculos antrais apresentaram maiores nÃveis de RNAm para ativina-A do que de pequenos folÃculos antrais (p<0,05). Quando comparamos a expressÃo do RNAm para ativina-A entre COCs de pequenos e grandes folÃculos antrais e suas cÃlulas da granulosa e da teca, nenhuma diferenÃa nos nÃveis de expressÃo foi observada (p>0,05). ApÃs o cultivo in vitro de folÃculos secundÃrios, a presenÃa de FSH sozinho ou associado com ativina-A ou GDF-9 aumentou a sobrevivÃncia, crescimento folicular e formaÃÃo de antro (p<0,05). O FSH tambÃm aumentou o RNAm para ativina-A, enquanto os folÃculos cultivados com ativina-A apresentaram nÃveis aumentados de RNAm para R-FSH (p<0,05). AlÃm disso, o GDF-9 diminuiu a expressÃo de RNAm para BMP -2 e -15 (p<0,05), mas nÃo teve efeito sobre a expressÃo de BMP -4, -6 e -7 (p>0,05). Em conclusÃo, durante a transiÃÃo de folÃculo primÃrio para secundÃrio hà uma diminuiÃÃo do RNAm para ativina-A, enquanto ocorre um aumento da expressÃo deste fator durante o crescimento de folÃculos antrais. FSH, ativina-A e GDF-9 estimulam o crescimento de folÃculos secundÃrios caprinos apÃs 6 dias de cultivo. ApÃs cultivo folicular, FSH controla a expressÃo de ativina-A e a expressÃo do R-FSH à regulada por ativina-A. Ainda, GDF-9 reduz a expressÃo do RNAm para BMP -2 e -15. === The aim of this study was to investigate the levels of messenger RNA (mRNA) for activin-A on goat preantral and antral follicles and the effects of follicle stimulating hormone (FSH), activin-A and growth and differentiation factor - 9 (GDF-9) on growth and mRNA expression for activin-A, GDF-9, bone morphogenetic protein (BMP) -2, -4, -6, -7, -15 and FSH receptor (FSH-R) in goat preantral follicles cultured in vitro. Initially, primordial, primary and secondary follicles, as well as cumulus-oocyte complexes (COCs) and mural granulosa/theca cells of small and large antral follicles were isolated mechanically from goat ovaries and the expression of mRNA for activin-A was evaluated by real-time PCR. For in vitro studies, goat secondary follicles were isolated and cultured for 6 days in the presence of FSH alone (50 ng/mL) or in combination with activin-A (100 ng/mL) or GDF-9 (200 ng/mL). Alone or in combination with FSH, the influence of activin-A on expression of activin-A and FSH-R, and the effect of GDF-9 on the levels of mRNA for GDF-9, FSH-R and BMP -2, -4, -6, -7 and -15 in secondary follicles after 6 days of culture were tested. For this, after extraction of total RNA and cDNA synthesis, the levels of mRNA for activin-A, GDF-9, FSH-R and BMP -2, -4, -6, -7 and -15 were quantified by real time PCR. The results showed that secondary follicles had lower levels of mRNA for activin-A, than compared to primary follicles (p<0.05). There was no difference in levels of mRNA for activin-A between primordial and primary or secondary (p>0.05). Allied to this, there was no difference between COCs of small and large antral follicles (p>0.05). Moreover, granulosa and theca cells of large antral follicles showed higher levels of mRNA for activin-A than in small antral follicles (p<0.05). When comparing mRNA expression for activin-A between COCs from small and large antral follicles and their granulosa and theca cells, no difference in expression levels was observed (p>0.05). After in vitro culture of secondary follicles, the presence of FSH either alone or associated with activin-A or GDF-9 increased survival, follicular growth and antrum formation (p<0.05). The FSH increased mRNA for activin-A, while the follicles cultured with activin-A showed increased levels of mRNA for FSH-R (p<0.05). In addition, GDF-9 decreased mRNA expression for BMP -2 and -15 (p<0.05), but had no effect on expression of BMP -4, -6, and -7 (p>0.05). In conclusion, during the transition from primary to secondary follicles there is a reduction of mRNA for activin-A, whereas there is an increased expression of this factor during the growth of antral follicles. FSH, activin-A and GDF-9 stimulate growth of goat secondary follicles after 6-day culture. After follicle culture FSH controls the expression of activin-A, and the expression of FSH-R is regulated by activin-A. Furthermore, GDF-9 reduces the mRNA expression for BMP-2 and -15.
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